分类

毕赤酵母感受态细胞

● 化转感受态
X-33 Chemically Competent Cell

产品规格 (CAT#: PC1002)

X-33 Chemically Competent Cell:                       100μl/支              保存:  -80℃(3个月)

Carrier DNA (10 μg/μl)                                             100μl              保存:-20℃(12个月)

pPICZ A (control vector, 10 ng/μl)                              10μl              保存:-80℃(12个月)

PD Buffer:                                                                   15ml             保存:      4℃(3个月)

PN Buffer                                                                    18ml             保存:      4℃(3个月)

产品名称
产品货号
产品规格
说明书下载
X-33  感受态细胞
PC1002S 10×100ul

PC1002M 50×100ul


基因型

wild-type


表型(Phenotype)

Mut+


产品说明

X-33菌株是由invitrogen公司开发专门用于重组蛋白表达的毕赤酵母菌株。X-33是未经过基因改造的野生型菌株(WT),不可利用营养缺陷培养基筛选重组成功的阳性菌落,一般使用100ug/ml的Zeocin或盐酸博来霉素进行筛选。X-33毕赤酵母的表型为Mut+(毕赤酵母是甲醇营养型酵母,可利用甲醇作为唯一碳源。甲醇代谢的第一步是:醇氧化酶利用氧分子将甲醇氧化为甲醛,毕赤酵母中有两个基因编码醇氧化酶:AOX1、AOX2,野生型毕赤酵母中大多数的醇氧化酶是 AOX1基因产物,甲醇可诱导 AOX1基因表达,AOX1蛋白产物最高可占细胞中可溶蛋白的30%以上,很多毕赤酵母表达质粒正是利用AOX1表达框进行外源基因表达的,若毕赤酵母含有有功能的AOX1基因就称为Mut+型;AOX2是AOX1的同源基因(97%的同源性),在缺失AOX1基因或AOX1基因丧失功能时,AOX2基因会发挥作用,产生一种表型为Muts的突变株,但AOX2基因氧化甲醇的能力比AOX1弱很多,结果是细胞代谢甲醇的能力下降,在甲醇培养基中生长缓慢。针对具体的蛋白,很难预测选择Mut+还是Muts作为宿主进行蛋白表达更好,虽然Mut+型酵母转录得到的mRNA更多,但超量的mRNA并不一定可以产生有活力的蛋白质;Muts型酵母虽然生长缓慢,转录得到的mRNA比Mut+少,但有可能更有利于蛋白形成正确构象,产生有活力的蛋白质)。X-33化转感受态细胞经特殊工艺制作,-80℃可保存三个月,线性化的pPICZ A质粒(3.3kb,ZeocinR in E.coli/ Pichia pastoris)检测转化效率>104 cfu/μg DNA。


操作方法

1. Carrier DNA 的预处理:将Carrier DNA 插入95℃金属浴5 min或插入浮漂中95℃水浴3 min,加热后快速插入冰中。

2. 取100 µl冰上融化的X-33感受态细胞,依次加入预冷的线性化质粒2-10 µg(加入DNA的体积不超过10ul,DNA纯度越高越好),预处理后的Carrier DNA 10 µl,PD Buffer 1.4ml并吸打几次混匀,30℃水浴60 min (30 min时翻转6-8次混匀)。

3. 将管放42℃水浴20 min (10 min时翻转6-8次混匀)。

4. 5000 rpm离心 40 s弃上清,加入PN Buffer 1.4ml重悬,离心 30s弃上清。

5. 加入PN Buffer 0.3ml重悬,若平板较多可直接涂板;若平板较少,可5000 rpm离心30秒,弃上清,留50ul上清重悬后涂布到含相应抗生素的筛选平板上,将平板倒置放于30℃培养箱培养3-5天。


培养基配制

含有Zeocin抗性基因的毕赤表达质粒转化X-33,可用YPDS+Zeocin/盐酸博莱霉素筛选,1L配方如下:

• 蛋白胨(peptone                           20g

• 酵母提取物(yeast extract              10g

• 山梨醇(sorbitol                       182.2 g

补水到 950ml,用盐酸调PH       7.0±0.2

     琼脂粉(agar                        20g(for plates only)

       121℃,20 min高压灭菌;待培养基温度降到55℃时,加入已过滤的50% 葡萄糖 40ml。

      加入100 mg/ml的Zeocin/盐酸博莱霉素母液到培养基中,终浓度100 ug/ml,倒平板。

     • 含有Zeocin/盐酸博莱霉素的YPDS可以在4°C保存两周(半衰期约10-15天)。


注意事项

1. 感受态细胞最好在冰上融化,转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量,或使用更大的平板。

2. pPICZ A质粒要整合进毕赤酵母基因组中,在转化前必须做单酶切进行线性化,多用SacI进行线性化。

3. 关于Zeocin/盐酸博莱霉素的使用浓度:Zeocin抗性基因单拷贝插入毕赤酵母基因组可用100 ug/ml的Zeocin/盐酸博莱霉素浓度筛选;多拷贝整合可增加毕赤酵母对Zeocin/盐酸博莱霉素的抗性水平,每增加一个拷贝,Zeocin/盐酸博莱霉素的筛选浓度可增加200 ug/ml,所以为了筛选到高拷贝的蛋白表达框可增加抗生素的使用浓度到500, 1000, 甚至2000 μg/ml。

4. X-33酵母菌株对高温敏感,最适生长温度为27-30℃;高于31℃,生长速度和转化效率下降。

产品名称
产品货号
产品规格
说明书下载
X-33  感受态细胞
PC1002S 10×100ul

PC1002M 50×100ul


基因型

wild-type


表型(Phenotype)

Mut+


产品说明

X-33菌株是由invitrogen公司开发专门用于重组蛋白表达的毕赤酵母菌株。X-33是未经过基因改造的野生型菌株(WT),不可利用营养缺陷培养基筛选重组成功的阳性菌落,一般使用100ug/ml的Zeocin或盐酸博来霉素进行筛选。X-33毕赤酵母的表型为Mut+(毕赤酵母是甲醇营养型酵母,可利用甲醇作为唯一碳源。甲醇代谢的第一步是:醇氧化酶利用氧分子将甲醇氧化为甲醛,毕赤酵母中有两个基因编码醇氧化酶:AOX1、AOX2,野生型毕赤酵母中大多数的醇氧化酶是 AOX1基因产物,甲醇可诱导 AOX1基因表达,AOX1蛋白产物最高可占细胞中可溶蛋白的30%以上,很多毕赤酵母表达质粒正是利用AOX1表达框进行外源基因表达的,若毕赤酵母含有有功能的AOX1基因就称为Mut+型;AOX2是AOX1的同源基因(97%的同源性),在缺失AOX1基因或AOX1基因丧失功能时,AOX2基因会发挥作用,产生一种表型为Muts的突变株,但AOX2基因氧化甲醇的能力比AOX1弱很多,结果是细胞代谢甲醇的能力下降,在甲醇培养基中生长缓慢。针对具体的蛋白,很难预测选择Mut+还是Muts作为宿主进行蛋白表达更好,虽然Mut+型酵母转录得到的mRNA更多,但超量的mRNA并不一定可以产生有活力的蛋白质;Muts型酵母虽然生长缓慢,转录得到的mRNA比Mut+少,但有可能更有利于蛋白形成正确构象,产生有活力的蛋白质)。X-33化转感受态细胞经特殊工艺制作,-80℃可保存三个月,线性化的pPICZ A质粒(3.3kb,ZeocinR in E.coli/ Pichia pastoris)检测转化效率>104 cfu/μg DNA。


操作方法

1. Carrier DNA 的预处理:将Carrier DNA 插入95℃金属浴5 min或插入浮漂中95℃水浴3 min,加热后快速插入冰中。

2. 取100 µl冰上融化的X-33感受态细胞,依次加入预冷的线性化质粒2-10 µg(加入DNA的体积不超过10ul,DNA纯度越高越好),预处理后的Carrier DNA 10 µl,PD Buffer 1.4ml并吸打几次混匀,30℃水浴60 min (30 min时翻转6-8次混匀)。

3. 将管放42℃水浴20 min (10 min时翻转6-8次混匀)。

4. 5000 rpm离心 40 s弃上清,加入PN Buffer 1.4ml重悬,离心 30s弃上清。

5. 加入PN Buffer 0.3ml重悬,若平板较多可直接涂板;若平板较少,可5000 rpm离心30秒,弃上清,留50ul上清重悬后涂布到含相应抗生素的筛选平板上,将平板倒置放于30℃培养箱培养3-5天。


培养基配制

含有Zeocin抗性基因的毕赤表达质粒转化X-33,可用YPDS+Zeocin/盐酸博莱霉素筛选,1L配方如下:

• 蛋白胨(peptone                           20g

• 酵母提取物(yeast extract              10g

• 山梨醇(sorbitol                       182.2 g

补水到 950ml,用盐酸调PH       7.0±0.2

     琼脂粉(agar                        20g(for plates only)

       121℃,20 min高压灭菌;待培养基温度降到55℃时,加入已过滤的50% 葡萄糖 40ml。

      加入100 mg/ml的Zeocin/盐酸博莱霉素母液到培养基中,终浓度100 ug/ml,倒平板。

     • 含有Zeocin/盐酸博莱霉素的YPDS可以在4°C保存两周(半衰期约10-15天)。


注意事项

1. 感受态细胞最好在冰上融化,转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量,或使用更大的平板。

2. pPICZ A质粒要整合进毕赤酵母基因组中,在转化前必须做单酶切进行线性化,多用SacI进行线性化。

3. 关于Zeocin/盐酸博莱霉素的使用浓度:Zeocin抗性基因单拷贝插入毕赤酵母基因组可用100 ug/ml的Zeocin/盐酸博莱霉素浓度筛选;多拷贝整合可增加毕赤酵母对Zeocin/盐酸博莱霉素的抗性水平,每增加一个拷贝,Zeocin/盐酸博莱霉素的筛选浓度可增加200 ug/ml,所以为了筛选到高拷贝的蛋白表达框可增加抗生素的使用浓度到500, 1000, 甚至2000 μg/ml。

4. X-33酵母菌株对高温敏感,最适生长温度为27-30℃;高于31℃,生长速度和转化效率下降。